I mechanoenhancer nel DNA permettono alle cellule di percepire la rigidità dei tessuti e potrebbero offrire un modo per contenere la fibrosi
I ricercatori hanno mappato gli interruttori del DNA che rispondono alla rigidità dei tessuti e hanno utilizzato l'editing epigenetico per ridurre l'attività genica indotta dalla rigidità, anche nei fibroblasti polmonari di pazienti con IPF.
Riepilogo
Gli stimoli meccanici, come la rigidità dei tessuti, influenzano il comportamento delle cellule e sono coinvolti nella fibrosi e nell'invecchiamento. Questo studio si è chiesto in che modo le cellule traducano tali stimoli in cambiamenti dell'attività genica. I ricercatori hanno coltivato cellule umane su gel morbidi e rigidi, osservando ampie variazioni nell'espressione genica e nell'accessibilità della cromatina. Hanno identificato e validato elementi regolatori del DNA sensibili agli stimoli meccanici, chiamati mechanoenhancer, che possono essere attivi in modo preferenziale su materiali morbidi o rigidi. Grazie all'editing epigenetico, sono riusciti a spostare l'espressione genica su materiali rigidi verso i livelli osservati su materiali più morbidi. Secondo l'abstract, l'editing dei mechanoenhancer in fibroblasti polmonari provenienti da donatori sani e da donatori con fibrosi polmonare idiopatica (IPF) ha ridotto le risposte trascrizionali indotte dalla rigidità e ha impedito l'attivazione dei geni associati alla transizione da fibroblasto a miofibroblasto. Questi risultati, ottenuti su cellule in coltura, suggeriscono una possibile strategia per intervenire sulle malattie determinate da stimoli meccanici, ma non rappresentano un trattamento già consolidato.
Riepilogo Dettagliato
Segnali meccanici come la rigidità della matrice extracellulare influenzano il comportamento cellulare e svolgono un ruolo nell'invecchiamento, nella fibrosi, nella formazione dei tumori e nell'aterosclerosi. Il modo in cui questi segnali rimodellano l'attività del DNA regolatorio non è ancora del tutto chiarito. Questo studio, pubblicato su Science, ha combinato profilazione dell'epigenoma, editing epigenetico e screening CRISPR per identificare elementi regolatori sensibili agli stimoli meccanici, chiamati mechanoenhancer.
I ricercatori hanno coltivato fibroblasti primari umani da prepuzio neonatale (HFF) e cellule epiteliali polmonari di derivazione tumorale A549 per 20 ore su idrogel morbidi (1 kPa) o rigidi (50 kPa), oltre che su plastica per colture tissutali. L'RNA-seq ha identificato 4.009 geni differenzialmente espressi negli HFF e 221 nelle cellule A549, con 76 geni in comune. Tra i geni condivisi figuravano geni canonicamente associati a YAP/TAZ come CYR61, CTGF e ANKRD1, che risultavano sovraespressi sui materiali più rigidi. Circa il 23% dei picchi di cromatina accessibile negli HFF e il 15% nelle cellule A549 differiva tra idrogel morbidi e rigidi, con una distribuzione equa a favore di ciascuna condizione di rigidità.
Le analisi dei motivi e di footprinting hanno suggerito un coinvolgimento dei fattori di trascrizione dipendente dalla rigidità. I motivi TEAD mostravano un maggiore legame proteico sugli idrogel rigidi in entrambi i tipi cellulari; i motivi della famiglia CEBP erano legati preferenzialmente sugli idrogel morbidi negli HFF. L'analisi HiCAR negli HFF ha suggerito che i contatti cromatinici a lungo raggio possano contribuire ai cambiamenti trascrizionali dipendenti dalla rigidità. Tuttavia, la sola accessibilità differenziale non dimostra che ogni regione responsiva sia un enhancer funzionale.
I test funzionali hanno identificato un enhancer sensibile agli stimoli meccanici, situato circa 14 kb a monte di FZD2, che si attiva sui materiali più rigidi. I ricercatori hanno inoltre indagato la regolazione di MYH9, che codifica la miosina non muscolare IIA e mostrava un'espressione dipendente dalla rigidità negli HFF. Uno screening di interferenza CRISPR ha preso di mira 114 regioni accessibili attorno a MYH9 usando 5.192 RNA guida. L'estratto fornito termina durante la descrizione di questo screening, quindi i risultati successivi della validazione non possono essere valutati qui.
L'abstract riporta che i mechanoenhancer regolano funzioni tra cui apoptosi, meccanotrasduzione, proliferazione e migrazione. La modifica di questi elementi su materiali rigidi ha portato l'espressione genica verso i livelli osservati su materiali più morbidi. Nei fibroblasti polmonari di donatori sani e con IPF, l'editing ha ridotto le risposte trascrizionali mediate dalla rigidità e ha impedito l'attivazione dei geni associati alla transizione da fibroblasto a miofibroblasto. Questi risultati supportano una potenziale strategia per colpire le malattie guidate da fattori meccanici, ma il materiale fornito non dimostra l'efficacia clinica, gli effetti a lungo termine nei tessuti o la superiorità rispetto agli inibitori di pathway.
Risultati Principali
- After 20 hours on 1 versus 50 kPa hydrogels, 4,009 genes in HFFs and 221 in A549 cells were differentially expressed, with 76 shared
- About 23% of accessible chromatin peaks in HFFs and 15% in A549 cells differed between soft and stiff hydrogels
- TEAD motifs showed greater protein engagement on stiff hydrogels in both cell types; CEBP family motifs were preferentially bound on soft hydrogels in HFFs
- Functional testing identified a stiffness-responsive enhancer approximately 14 kb upstream of FZD2 that becomes activated on stiffer materials
- A MYH9-focused CRISPRi screen targeted 114 accessible regions using 5,192 guide RNAs; the excerpt ends before its detailed validation results
- The abstract reports that mechanoenhancer editing on rigid materials tuned gene expression toward levels observed on softer materials
- According to the abstract, editing in healthy and IPF donor lung fibroblasts reduced stiffness-driven transcription and prevented activation of genes associated with the fibroblast-to-myofibroblast transition
Metodologia
I ricercatori hanno utilizzato RNA-seq e ATAC-seq in HFF e cellule A549 coltivate per 20 ore su idrogel di poliacrilammide da 1 kPa e 50 kPa e su plastica per colture tissutali. Gli esperimenti di sequenziamento sono stati eseguiti almeno in duplicato per ciascuna condizione. L'espressione differenziale è stata definita con FDR<0,05 e |log2 fold change|>0,5. Le analisi hanno incluso l'arricchimento dei motivi dei fattori di trascrizione e il footprinting con TOBIAS; la mappatura delle interazioni della cromatina con HiCAR è stata eseguita negli HFF su idrogel morbidi e rigidi. I test funzionali hanno incluso costrutti reporter di enhancer e CRISPRi con dCas9-KRAB. Lo screening descritto per *MYH9* ha utilizzato 5.192 guide in 114 regioni, con cellule marcate e separate in frazioni MYH9-high e MYH9-low. L'abstract riporta inoltre screening CRISPR fenotipici e di RNA-seq a singola cellula, nonché esperimenti su fibroblasti polmonari di donatori sani e con IPF, ma i relativi metodi e risultati dettagliati non sono inclusi nell'estratto fornito.
Limitazioni dello Studio
Gli esperimenti dettagliati riportati utilizzano fibroblasti prepuziali neonatali in coltura e la linea cellulare A549 derivata da tumore, che potrebbero non riflettere il tessuto umano invecchiato. Gli autori suggeriscono che le cellule primarie e quelle immortalizzate possano differire per quanto riguarda la memoria meccanica. L'estratto si interrompe durante la presentazione dei risultati dello screening di MYH9; i risultati successivi dello screening e gli esperimenti sui fibroblasti di IPF non sono disponibili, e questi ultimi sono supportati qui soltanto dall'abstract. Il materiale fornito non dimostra la durata a lungo termine in vivo, la sicurezza rispetto agli effetti off-target né la fattibilità della somministrazione. Il testo fornito non include alcuna dichiarazione sui conflitti di interesse.
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