Los mecanopotenciadores del DNA permiten a las células detectar la rigidez de los tejidos y podrían ofrecer una vía para controlar la fibrosis
Investigadores cartografiaron los interruptores del DNA que responden a la rigidez de los tejidos y utilizaron edición epigenética para reducir la actividad génica impulsada por dicha rigidez, incluso en fibroblastos pulmonares de pacientes con IPF.
Resumen
Las señales mecánicas, como la rigidez de los tejidos, influyen en el comportamiento celular y están implicadas en la fibrosis y el envejecimiento. Este estudio se preguntó cómo las células convierten esas señales en cambios en la actividad génica. Los investigadores cultivaron células humanas sobre geles blandos y rígidos, y encontraron cambios generalizados en la expresión génica y en la accesibilidad de la cromatina. Identificaron y validaron elementos reguladores del DNA sensibles a estímulos mecánicos, denominados mecanopotenciadores (mechanoenhancers), que pueden estar activos de forma preferente tanto en materiales blandos como rígidos. Mediante edición epigenética, desplazaron la expresión génica sobre materiales rígidos hacia los niveles observados en materiales más blandos. Según el resumen, la edición de los mecanopotenciadores en fibroblastos pulmonares de donantes sanos y de donantes con fibrosis pulmonar idiopática (FPI) redujo las respuestas transcripcionales impulsadas por la rigidez e impidió la activación de genes asociados con la transición de fibroblasto a miofibroblasto. Estos hallazgos, obtenidos en cultivos celulares, sugieren una posible vía para abordar enfermedades impulsadas por factores mecánicos, pero no constituyen un tratamiento establecido.
Resumen detallado
Las señales mecánicas, como la rigidez de la matriz extracelular, influyen en el comportamiento celular y participan en el envejecimiento, la fibrosis, la formación de tumores y la aterosclerosis. Aún no se comprende del todo cómo estas señales remodelan la actividad del DNA regulador. Este estudio, publicado en Science, combinó el perfilado del epigenoma, la edición epigenética y el cribado con CRISPR para identificar elementos reguladores que responden a estímulos mecánicos, denominados mecanopotenciadores (mechanoenhancers).
Los investigadores cultivaron fibroblastos primarios humanos de prepucio neonatal (HFF) y células epiteliales de pulmón derivadas de tumor A549 durante 20 horas sobre hidrogeles blandos (1 kPa) o rígidos (50 kPa), así como sobre plástico de cultivo de tejidos. La secuenciación de RNA (RNA-seq) identificó 4.009 genes con expresión diferencial en los HFF y 221 en las células A549, con 76 compartidos. Entre los genes compartidos figuraban genes canónicos asociados a YAP/TAZ, como *CYR61*, *CTGF* y *ANKRD1*, que estaban sobrerregulados en los materiales más rígidos. Alrededor del 23 % de los picos de cromatina accesible en los HFF y el 15 % en las células A549 diferían entre los hidrogeles blandos y rígidos, con una distribución equitativa a favor de cada condición de rigidez.
Los análisis de motivos y de huellas (footprinting) apuntaron a una interacción de factores de transcripción dependiente de la rigidez. Los motivos TEAD mostraron una mayor unión de proteínas en los hidrogeles rígidos en ambos tipos celulares; los motivos de la familia CEBP se unían preferentemente en los hidrogeles blandos en los HFF. El análisis HiCAR en los HFF sugirió que los contactos de cromatina de largo alcance podrían contribuir a los cambios transcripcionales dependientes de la rigidez. Sin embargo, la accesibilidad diferencial por sí sola no demuestra que cada región con respuesta sea un potenciador funcional.
Las pruebas funcionales identificaron un potenciador con respuesta mecánica situado aproximadamente 14 kb corriente arriba de *FZD2*, que se activa en materiales más rígidos. Los investigadores también estudiaron la regulación de *MYH9*, que codifica la miosina IIA no muscular y mostró una expresión dependiente de la rigidez en los HFF. Un cribado de interferencia con CRISPR se dirigió a 114 regiones accesibles alrededor de *MYH9* mediante 5.192 RNA guía. El extracto proporcionado termina mientras se describe este cribado, por lo que aquí no se pueden evaluar sus resultados de validación posteriores.
El resumen indica que los mecanopotenciadores regulan funciones como la apoptosis, la mecanotransducción, la proliferación y la migración. Editar estos elementos en materiales rígidos ajustó la expresión génica hacia los niveles observados en materiales más blandos. En fibroblastos pulmonares de donantes sanos y con fibrosis pulmonar idiopática (IPF), la edición redujo las respuestas transcripcionales mediadas por la rigidez e impidió la activación de genes asociados con la transición de fibroblasto a miofibroblasto. Estos hallazgos respaldan una posible estrategia para abordar enfermedades de origen mecánico, pero el material proporcionado no establece la eficacia clínica, los efectos a largo plazo en el tejido ni la superioridad frente a los inhibidores de vías.
Hallazgos clave
- After 20 hours on 1 versus 50 kPa hydrogels, 4,009 genes in HFFs and 221 in A549 cells were differentially expressed, with 76 shared
- About 23% of accessible chromatin peaks in HFFs and 15% in A549 cells differed between soft and stiff hydrogels
- TEAD motifs showed greater protein engagement on stiff hydrogels in both cell types; CEBP family motifs were preferentially bound on soft hydrogels in HFFs
- Functional testing identified a stiffness-responsive enhancer approximately 14 kb upstream of FZD2 that becomes activated on stiffer materials
- A MYH9-focused CRISPRi screen targeted 114 accessible regions using 5,192 guide RNAs; the excerpt ends before its detailed validation results
- The abstract reports that mechanoenhancer editing on rigid materials tuned gene expression toward levels observed on softer materials
- According to the abstract, editing in healthy and IPF donor lung fibroblasts reduced stiffness-driven transcription and prevented activation of genes associated with the fibroblast-to-myofibroblast transition
Metodología
Los investigadores utilizaron RNA-seq y ATAC-seq en HFFs y células A549 cultivadas durante 20 horas sobre hidrogeles de poliacrilamida de 1 kPa y 50 kPa, y sobre plástico de cultivo tisular. Los experimentos de secuenciación se realizaron al menos por duplicado en cada condición. La expresión diferencial se definió con un FDR<0,05 y un |log2 fold change|>0,5. Los análisis incluyeron el enriquecimiento de motivos de factores de transcripción y el análisis de footprinting con TOBIAS; además, se realizó un mapeo de interacciones de la cromatina mediante HiCAR en HFFs sobre hidrogeles blandos y rígidos. Las pruebas funcionales incluyeron construcciones reporteras de enhancers y CRISPRi con dCas9-KRAB. El cribado de MYH9 descrito utilizó 5192 guías en 114 regiones, y las células se tiñeron y se clasificaron en fracciones con MYH9 alto y MYH9 bajo. El resumen informa además de cribados CRISPR fenotípicos y de RNA-seq de célula única, así como de experimentos en fibroblastos pulmonares de donantes sanos y con IPF, pero los métodos detallados y los resultados de estos no se incluyen en el extracto proporcionado.
Limitaciones del estudio
Los experimentos detallados que se presentan utilizan fibroblastos cultivados de prepucio neonatal y la línea celular A549, derivada de un tumor, que podrían no reflejar el tejido humano envejecido. Los autores sugieren que las células primarias y las inmortalizadas pueden diferir en cuanto a la memoria mecánica. El extracto termina durante los resultados del cribado de MYH9; los resultados detallados de cribados posteriores y los experimentos con fibroblastos de FPI no están disponibles, y estos últimos se apoyan aquí únicamente en el resumen. El material proporcionado no permite establecer la durabilidad in vivo a largo plazo, la seguridad frente a efectos fuera de la diana ni la viabilidad de la administración. El texto proporcionado no incluye ninguna declaración de conflicto de intereses.
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