Longevity & AgingArtículo de investigaciónAcceso abierto

El envejecimiento impulsa la acumulación de neutrófilos en múltiples órganos, alimentando la inflamación

El mapeo unicelular revela cómo los neutrófilos se acumulan y adoptan estados inflamatorios en los órganos envejecidos, con la IL-6 impulsando la senescencia tisular.

viernes, 2 de octubre de 2026 2 visualizaciones
Publicado en Aging Cell
Fluorescence microscopy image of aged mouse liver tissue showing bright green and purple stained neutrophils clustered around blood vessels against a dark blue DAPI nuclear background

Resumen

Mediante secuenciación de RNA unicelular integrada en ocho órganos de ratones jóvenes y envejecidos, los investigadores identificaron un notable aumento asociado a la edad en la abundancia de neutrófilos, particularmente en el hígado, el pulmón, la vasculatura y el intestino. Los neutrófilos envejecidos mostraron programas intensificados de glucólisis y especies reactivas de oxígeno, formaron más trampas extracelulares de neutrófilos y secretaron factores que desencadenaron senescencia en células del músculo liso vascular y células hepáticas. Se caracterizó un subconjunto de neutrófilos enriquecido en la vejez (Neu06-IL6), y la señalización de IL-6 fue identificada como un eje regulador clave. El análisis de médula ósea reveló una población progenitora enriquecida en animales viejos (HPC11) con mayor sesgo mieloide, lo que sugiere que el fenotipo inflamatorio de los neutrófilos en el envejecimiento tiene su origen en etapas anteriores, en la programación de las células madre hematopoyéticas. La señalización de FGF fue identificada computacionalmente como un regulador candidato de estos cambios en la médula ósea.

Resumen detallado

Los neutrófilos —los glóbulos blancos circulantes más abundantes— son reconocidos cada vez más como contribuyentes a la inflamación estéril y el daño tisular durante el envejecimiento; sin embargo, su remodelación a nivel de órganos no ha sido caracterizada de forma sistemática. Este estudio aborda esa laguna integrando conjuntos de datos de secuenciación de RNA de célula única (scRNA-seq) procedentes de ocho tejidos —pulmón, corazón, cerebro, vasculatura, sangre periférica, intestino, riñón e hígado—, que capturan 256.949 células de 66 muestras de ratones jóvenes y envejecidos. Se utilizó el análisis recíproco de componentes principales (RPCA) para armonizar los efectos de lote entre plataformas de secuenciación, lo que produjo uno de los atlas inmunológicos multiorgánicos más completos en la investigación del envejecimiento hasta la fecha.

Las proporciones de neutrófilos aumentaron notablemente con la edad en varios órganos periféricos. Los cambios más drásticos se observaron en el hígado (0,75% en jóvenes frente a 5,26% en viejos), el pulmón (0,88% frente a 4,14%), la vasculatura (1,05% frente a 3,68%) y el intestino (1,22% frente a 3,57%). El análisis composicional bayesiano (scCODA) confirmó un aumento creíble asociado a la edad en los neutrófilos hepáticos (probabilidad de inclusión = 0,968; cambio en log2 = 2,61). La tinción de inmunofluorescencia para CD11b y MPO validó in vivo la acumulación de neutrófilos en estos órganos, y la citometría de flujo de médula ósea confirmó una mayor proporción de neutrófilos en ratones envejecidos (p < 0,05). Cabe destacar que el cerebro no mostró un aumento significativo de neutrófilos, lo cual es coherente con la restricción que ejerce la barrera hematoencefálica sobre las células inmunitarias circulantes.

Se construyó un atlas específico de neutrófilos con 5.210 células (2.400 jóvenes, 2.810 viejas) y se sometió a análisis de expresión diferencial pseudobulk. Veintiséis genes estaban sobreexpresados y 985 genes estaban enriquecidos en los neutrófilos jóvenes en comparación con los envejecidos. El análisis de enriquecimiento de conjuntos de genes mostró que las rutas de glucólisis y de especies reactivas de oxígeno (ROS) estaban enriquecidas en los neutrófilos envejecidos, mientras que la señalización de TNF-α e IFN-λ predominaba en los neutrófilos jóvenes. Los neutrófilos envejecidos también mostraron una mayor formación de NET mediante tinción con Cytox Green (p < 0,01). Los medios condicionados de neutrófilos de ratones envejecidos aplicados a células de músculo liso vascular (MOVAS) y a células derivadas de hepatocitos (AML-12) incrementaron significativamente la positividad para β-galactosidasa asociada a senescencia, elevaron la expresión proteica de MMP9, MMP12, P16 y P21, y regularon al alza genes del SASP, incluidos Il6, Tnf y Mmp9 (todos p < 0,05), lo que demuestra la inducción funcional de senescencia paracrina.

La agrupación no supervisada identificó siete subconjuntos de neutrófilos (Neu01–Neu07). Un clúster, Neu06-IL6, estaba específicamente enriquecido en ratones envejecidos y se caracterizaba por una expresión elevada de Il6, genes del complemento y programas de estrés oxidativo. La estimulación in vitro de células similares a neutrófilos HL-60 con IL-6 reprodujo los cambios transcripcionales inflamatorios y asociados a senescencia en células MOVAS y AML-12 cocultivadas, lo que respalda a IL-6 como mediador funcional de este estado de neutrófilos envejecidos. Los análisis espaciales y de comunicación celular mediante CellChat identificaron además IL-6 como un eje de señalización prominente entre los neutrófilos envejecidos y las poblaciones de células del estroma en múltiples tejidos.

El análisis de scRNA-seq de médula ósea en células progenitoras hematopoyéticas reveló una población enriquecida en animales viejos, HPC11, caracterizada por firmas transcripcionales de mayor predisposición mieloide, lo que sugiere que el origen upstream de los estados inflamatorios de los neutrófilos reside en la reprogramación a nivel de progenitores durante el envejecimiento. El análisis de perturbación in silico mediante CellOracle identificó la señalización de FGF como candidata a reguladora de los programas transcripcionales específicos de cada subtipo de HPC. En conjunto, estos hallazgos construyen un marco multiorgánico para comprender cómo la remodelación de los neutrófilos —que comienza en la médula ósea y se propaga a los tejidos periféricos— contribuye a los entornos tisulares de inflamación estéril que caracterizan el envejecimiento biológico, con la señalización de IL-6 y FGF como posibles dianas terapéuticas.

Hallazgos clave

  • Liver neutrophil proportion rose from 0.75% in young to 5.26% in aged mice; lung from 0.88% to 4.14%; vasculature from 1.05% to 3.68%; intestine from 1.22% to 3.57%
  • Bayesian scCODA confirmed credible age-associated liver neutrophil increase (inclusion probability = 0.968; log2 fold change = 2.61)
  • Aged neutrophil atlas (5,210 cells) showed 26 genes upregulated with age; glycolysis and ROS pathways enriched in old, TNF-α and IFN-λ pathways enriched in young
  • Conditioned media from aged neutrophils significantly increased senescence markers (P16, P21, MMP9, MMP12) and SASP gene expression (Il6, Tnf, Mmp9) in vascular and liver cells (p < 0.05)
  • Aged neutrophil subset Neu06-IL6 showed elevated IL-6, complement, and oxidative stress gene programs; IL-6 stimulation of neutrophil-like cells in vitro reproduced paracrine senescence induction
  • Bone marrow scRNA-seq identified old-enriched progenitor population HPC11 with enhanced myeloid priming, suggesting age-related neutrophil reprogramming begins at the stem cell level
  • In silico perturbation analysis nominated FGF signaling as a candidate regulator of aging-associated hematopoietic progenitor transcriptional states

Metodología

El estudio integró conjuntos de datos de scRNA-seq de acceso público procedentes de ocho órganos (pulmón, corazón, cerebro, vasculatura, sangre periférica, intestino, riñón e hígado) de ratones jóvenes y envejecidos, con un total de 256.949 células en 66 muestras; se empleó integración RPCA para corregir efectos de lote entre plataformas de secuenciación. Los análisis específicos de neutrófilos incluyeron expresión diferencial pseudobulk, enriquecimiento de conjuntos de genes, agrupamiento no supervisado en siete subconjuntos y análisis composicional bayesiano mediante scCODA. La validación in vitro utilizó medios condicionados de neutrófilos aislados de ratones jóvenes y envejecidos aplicados a las líneas celulares MOVAS y AML-12, cuantificándose la senescencia mediante tinción con β-galactosidasa, inmunotransferencia y qPCR. Las pruebas estadísticas incluyeron test de suma de rangos de Wilcoxon, t-tests bilaterales no pareados y ANOVA de dos vías con corrección de Tukey; la citometría de flujo de médula ósea utilizó n = 6 ratones por grupo.

Limitaciones del estudio

El estudio se basa principalmente en modelos murinos y, aunque los hallazgos a nivel de órganos son biológicamente convincentes, la traducción directa a la biología del envejecimiento humano requiere validación en cohortes humanas. Los experimentos in vitro con medios condicionados demuestran efectos paracrinos, pero no pueden reproducir completamente el complejo microentorno tisular in vivo; la direccionalidad causal entre los neutrófilos Neu06-IL6 y la senescencia tisular aún debe establecerse in vivo. Las nominaciones computacionales de perturbación para la señalización de FGF son únicamente generadoras de hipótesis y requieren validación experimental. Los autores no declararon conflictos de interés.

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